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游离脂肪酸(NEFA)检测试剂盒

[商品编号]:XL-2955 [市场价]:¥询价

[CAS]:

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产品描述

 

游离脂肪酸(NEFA)检测试剂盒

 

一、测定原理:

游离脂肪酸(NEFA)能与铜离子结合形成脂肪酸的铜盐而溶于氯仿中,其含量与游离脂肪酸含量成正比。用铜试剂测定其中铜离子的含量,即可推算出游离脂肪酸的含量。

二、试剂组成与配制(50/48样):

试剂一:氯仿(三氯甲烷)(分析纯),自备。

试剂二:缓冲液,40mL×1瓶,室温保存6个月。

试剂三:铜试剂,甲液30mL×1瓶,乙液 30mL×1瓶,丙液 5mL×1瓶,4℃保存6个月。试剂三铜试剂的配制:按甲液乙液丙液=10∶9∶1的比例进行配制,需多少配多少,配好后4℃可保存二周。

试剂四:显色剂,粉剂×2支,稀释液10mL×2瓶,4℃保存3个月。试剂四显色剂的配制:临用时将1支粉剂溶解于110mL稀释液中,配好后4℃可保存二周。

试剂五:棕榈酸标准品粉剂×2支,溶剂50mL×1瓶,4℃保存3个月。1000µmol/L棕榈酸标准品的配制:将一支粉剂用溶剂溶解后定容至20mL(注意用溶剂将装粉剂的小离心管洗净)。

试剂六:双蒸水40mL×1瓶(做空白管用)。

三、操作步骤:

1、分别取玻璃试管进行编号(最好用带盖的磨口试管进行实验,防止试剂挥发及更好的抽提)。

2、操作表:

 

空白管

标准管

测定管

双蒸水(mL

0.2

0.2

 

1000µmol/L棕榈酸标准品(mL

 

0.2

 

待测样本(mL

 

 

0.2

试剂二缓冲液(mL

0.5

0.5

0.5

试剂三铜试剂(mL

1.0

1.0

1.0

三氯甲烷mL

4.0

3.8

4.0

充分混匀抽提2分钟,3500/分离心10分钟,仔细吸去上层蓝色液体及蛋白凝块弃之,吸取下层抽提液2mL进行显色。详细操作见注

下层抽提液(mL

2.0

2.0

2.0

显色剂(mL

0.25

0.25

0.25

混匀,室温放置2分钟,在440nm1cm光径,三氯甲烷调零后比色

[]:详细操作步骤:

1、充分混匀准确抽提2分钟(用秒表计时)。如果您没有磨口试管,可用普通玻璃试管代替,但必须用保鲜薄膜封口,以便防止液体挥发及溅出。

2、抽提完后以3500/分离心10分钟,若发现下层液体呈半凝固状态、凝固层较厚或下层液体不足2mL时,则可用小玻棒或移液器吸嘴轻轻搅拌后再次离心,直至分层清楚。

3 然后用注射器接上硬膜外麻醉针套吸取上层液体及凝固层并弃之。

4、另取一个注射器及硬膜外麻醉针心针套,将硬膜外麻醉针心插入针套中,小心插入下层抽提液中,拔出针心,接上注射器,吸取下层抽提液2.32.5mL至另一试管中。(这样可避免上层液体及凝固层混入下层液体中,若混入上层液体及凝固层,则需重新离心后再取下层抽提液,否则会影响结果。)若偶然发现抽提液有雾状混浊,可放入37℃水浴12分钟即可。

5、再从上述试管中准确吸取2mL下层抽提液加入另一试管中,加显色剂进行显色。

6、比色皿在用双蒸水冲洗干净后,还必须用无水乙醇冲洗,然后加三氯甲烷调零,否则加入的三氯甲烷中会混有水珠(三氯甲烷和水不互溶)。

7、操作工程中最好用玻璃管,某些材质的塑料离心管也可使用(用加入三氯甲烷的方法验证是否可用)。

以上七点为实验成败的关键。硬膜外麻醉针本所有售。

四、计算公式及举例:

1、血清计算公式及举例:

、公式:见说明书

、计算举例:

取某人血清0.2mL按操作表进行游离脂肪酸测定。测得各管吸光度如下:空白管为0.045,标准管为0.311,测定管为0.159。则计算如下:

   2、组织样本计算公式及举例:

、公式:见说明书

Cpr:组织样本蛋白浓度,gprot/Lprot指蛋白)。

注:非蛋白样可以将样本质量浓度替换蛋白浓度代入计算。

、计算举例:见说明书

取大鼠10%肝组织匀浆上清液0.2mL按操作表进行游离脂肪酸测定。测得各管吸光度如下:空白管为0.045,标准管为0.311,测定管为0.29310%肝组织中蛋白浓度为12.24g/L,则计算结果如下:

五、注意点:

1、实验必须用分光光度计比色,不可用酶标仪、半自动及全自动生化分析仪比色(有机溶剂对这些仪器会有损坏)。

2、显色前吸取下层抽提液时,吸管不要触及管壁,以免沾染管壁上粘着的铜试剂。下层抽提液必须清澈,否则会使结果偏高。

3、胆红素可被试剂一抽提而干扰比色,故黄疸血清须做一对照管,即最后不加显色剂而用正丁醇代替,在测定管光密度读数中减去此对照管的光密度读数。

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